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明膠酶譜法電泳試劑盒

更新時間:2018-10-09      瀏覽次數(shù):2539

明膠酶譜法電泳試劑盒


1. 簡介:
基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinase, MMP)以無活性的酶原形式分泌,活化后能夠降解細胞外基質(zhì)的膠原蛋白,又稱膠原酶。通過影響細胞外基質(zhì),膠原酶參與胚胎發(fā)育、形態(tài)發(fā)生、組織重塑等過程,并參與炎癥、腫瘤、心血管、神經(jīng)等許多疾病過程。血漿與組織中的MMP-2、MMP-9參與各種生理與病理過程,其在研究診斷和治療中的意義日益受到重視。
 
2. 檢測原理:
本試劑盒采用酶譜法(Zymography)檢測MMP-2、MMP-9 活性。Zymography 是一種廣為使用的、基于SDS-PAGE 電泳和反相凝膠染色的蛋白酶檢測方法,其靈敏度可達1 nM,高于ELISA方法,其基本原理和程序是:制備加有膠原酶底物的SDS-PAGE 凝膠,含蛋白酶的樣品在此凝膠中進行電泳,電泳結(jié)束后取出凝膠與酶反應(yīng)Buffer 孵育,凝膠染色與脫色。凝膠中由于含底物蛋白而被深染,形成深色背景,但在有蛋白酶條帶的位置,蛋白酶將降解凝膠中的底物蛋白,因而不被染色而形成透亮區(qū)域,從而能同時指示MMP-2、MMP-9 的大小位置(酶譜)及活性。本試劑盒提供MMP-2、MMP-9 特異蛋白底物及酶學反應(yīng)緩沖液,可檢測少至0.1~0.5 μl 血液中的MMP-2、MMP-9 酶譜及活性,檢測靈敏度~1nM。試劑盒可進行50次標準小膠檢測,如果小膠加樣孔為10~15個,則總計可檢測500~750個樣品。
 
3. 檢測目的:
本試劑盒用于檢測MMP-2、MMP-9 酶譜及活性(Detect MMP2 and MMP9 as low as 1nM)。
 
4.  試劑盒組成與儲存:
A. 2 × SDS-PAGE non-reducing buffer 1.5 ml μl, −20 ºC;
B. 10 × Substrate G, 50 ml, −20 ºC;
C. 10 × Buffer A, 50 ml, 4 ºC, 使用時用蒸餾水稀釋;
D. 10 × Buffer B, 50 ml, 4 ºC, 使用時用蒸餾水稀釋;
E. SDS-PAGE 凝膠蛋白質(zhì)考馬斯亮藍染色液, 4 ºC。
 
5.檢測步驟
5.1 制備含MMP底物蛋白的SDS-PAGE凝膠:推薦分離膠濃度為8%。按照標準程序制備SDS PAGE凝膠。將10 × substrate G 融化,并90 ºC 加熱5分鐘。分別在濃縮膠和分離膠中額外加入10 × substrate G 并使之稀釋10倍,混勻后加入過硫酸銨和TEMED,等待凝膠聚合。
5.2 待測樣品1:1 稀釋于2 × SDS-PAGE non-reducing buffer (用完后可自行配制:4% SDS, 100 mM Tris-Cl  pH6.8, 20% glycerol, 0.02% bromophnol blue),混合后直接上樣。切勿加熱變性,并且僅使用不加還原劑的上樣緩沖液。可通過預(yù)試驗確定加樣量,使用普通蛋白預(yù)染Marker 即可。
陽性對照(可選步驟):可取人、小鼠、大鼠或兔100μl 全血與100μl 2 × SDS-PAGE nonreducing buffer 等體積混合,取5-15μl 上樣。
注:因為全血成分復(fù)雜,MMP活性較低,好的方法是將全血中白細胞進行分離做陽性對照
5.3 低電流恒流電泳,每一塊小膠電流為20 mA/gel。溴酚藍跑出凝膠前沿時結(jié)束電泳。
5.4 洗滌凝膠:取出凝膠,去除濃縮膠,放入容器內(nèi)??上扔眠m量蒸餾水沖洗凝膠,然后加入10 ml 1× Buffer A(用蒸餾水稀釋),室溫漂洗凝膠2 × 30 分鐘。中間換液。
5.5 孵育:倒掉Buffer A。加入10 ml 1× Buffer B(蒸餾水稀釋),室溫或37ºC 孵育1~5 小時。陽性對照或者血中的MMP 通常37ºC 孵育1 小時即可顯示。如MMP 活性低,應(yīng)延長孵育時間為10小時或過夜。
5.6 顯色:倒掉Buffer B,加入SDS-PAGE凝膠蛋白質(zhì)考馬斯亮藍染色液(操作步驟見后面所附SDS-PAGE凝膠蛋白質(zhì)考馬斯亮藍染色液說明書)。凝膠的大部分區(qū)域被深染,在有MMP 條帶的位置不被染色而形成透亮區(qū)域。
透明區(qū)域的位置和范圍指示MMP-2、MMP-9 的大小位置(酶譜)及活性。陽性對照將在66~72 (MMP-2)、92 (MMP-9)、130 (proMMP-9)、225 (proMMP-9) kDa位置出現(xiàn)透明條帶。
5.7 條帶掃描:將凝膠放在掃描儀上掃描。雖然MMP條帶透明,但凝膠背景并非真正全黑。解決辦法:可用非透射光掃描,或用軟件圖像處理程序調(diào)整背景顯示為灰度顯示,并盡量設(shè)置為黑色。MMP 條帶則為白色,這種背景黑條帶白的格式是英文論文中常見的格式。

注意事項:
1.制備聚丙烯酰胺時應(yīng)注意排除氣泡。
2.明膠酶譜的活性受鈣離子,鋅離子,和PH值等因素的影響,因此緩沖液配制應(yīng)嚴格準確,盡量用超純水,孵育溫度也掌握好。
3.用大梳子
4.孵育液的PH在7.5-7.6,復(fù)性的TRITON時間長了會有絮狀物,所以實驗時盡量使用新鮮配置的。
5.孵育的37度不要在CO2培養(yǎng)箱中,因為會改變孵育液的PH值,在普通孵箱即可。
6.明膠要4度保存,配好后1周內(nèi)使用

凝膠制備:
1.玻璃板對齊后放入夾中,垂直卡緊,加滿水檢漏。
2.配10%分離膠,APS和TEMED作用為促凝,后灌膠前加。若板不漏水,則將水倒出,并用吸水紙洗凈后灌膠,灌至大約3/4處,上面加滿水壓平。
3.配濃縮膠,同樣地,APS和TEMED后加,分離膠灌入約30min后觀察小燒杯中剩余分離膠是否已凝,同時仔細觀察可見玻板水和膠間有一條折線,說明膠已凝固。
4.將上面的水倒去,吸水紙洗凈,灌入濃縮膠,灌滿,注意一定不要有氣泡,然后將梳子插入,注意保持水平,約30min后凝固可用。
5.拔梳子在電泳緩沖液中拔,加樣孔用小針筒沖洗干凈再上樣,注意上樣時勿使樣品逸至鄰孔,樣品混勻時要輕,不要產(chǎn)生氣泡,否則加樣時易導(dǎo)致逸出而使結(jié)果不準確。

明膠酶譜法電泳試劑盒

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